摘要:目的建立流式細(xì)胞儀測(cè)定血小板胞漿游離鈣離子濃度\[Ca2+\]i的方法。方法 用Fluo3AM作為鈣指示劑,在有或無(wú)細(xì)胞外鈣\[Ca2+\]o存在的條件下,測(cè)定靜息和凝血酶激活狀態(tài)下人血小板胞漿游離鈣離子濃度\[Ca2+\]i的變化。結(jié)果Fluo3AM標(biāo)記的血小板的平均熒光強(qiáng)度明顯增加。凝血酶使負(fù)載Fluo3AM標(biāo)記的血小板胞漿\[Ca2+\]i明顯增加,且顯示劑量依賴(lài)和對(duì)\[Ca2+\]o的依賴(lài)。結(jié)論凝血酶引起血小板胞漿\[Ca2+\]i增加的來(lái)源主要是\[Ca2+\]o,可能也有部分是內(nèi)鈣釋放的參與。
關(guān)鍵詞:流式細(xì)胞儀;血小板;鈣;凝血酶
Determinationofthelevelofcytoplasmicfreecalcium
inhumanplaetswithflowcytometry
ZhuangMingming,WenYixin,LiuShaolie,HongXiaopeng
(DepartmentofClinicalLaboratoryofOverseasChineseHospital,Puning515300,China)
ABSTRACT:ObjectiveTosetupamethodtodeterminecytoplasmicfreecalcium\[Ca2+\]iinhumanplaetswithflowcytometry.MethodsAsacalciumindicator,Fluo3AMwasusedtodeterminethechanges,inducedbythrombin,ofthelevelofplaetplasmafreecalcium\[Ca2+\]iinpresenceorabsenceofoutsidecalcium\[Ca2+\]o,inordertoelucidatewheretheplaetplasmafreecalcium\[Ca2+\]imainlycomefromanditsroleintheactivityofplaets.ResultsThegeometricmeanoffluorescenceintensityoftheplaet,labeledwithFluo3AM,wasincreasedobviously.Theconcentrationofplaetplasmafreecalcium\[Ca2+\]iwasincreasedsignificantlybythrombininadoseand\[Ca2+\]odependentmanner.ConclusionTheincreasedlevelofplaetplasmafreecalcium\[Ca2+\]o,inducedbythrombin,mainlycomesfrom\[Ca2+\]oandpartlyfromthereleased\[Ca2+\]oofintraplaetprobably.
KEYWORDS:flowcytometry;plaet;calcium;thrombin
血小板胞漿游離鈣離子\[Ca2+\]i與血小板的許多形態(tài)與功能活動(dòng)有關(guān),如血小板形態(tài)的改變、聚集、收縮、釋放、分泌等。也與血小板參與的凝血、血液流變性調(diào)節(jié)(如血液黏度、流動(dòng)性等)以及動(dòng)脈粥樣硬化、腦血管疾病的發(fā)生和發(fā)展、血管內(nèi)皮活動(dòng)等生理、病理過(guò)程有關(guān)。研究發(fā)現(xiàn)\[1\],當(dāng)血小板內(nèi)的\[Ca2+\]i達(dá)到一定的閾值(400nmol/L)就會(huì)發(fā)生釋放反應(yīng)以及可逆性聚集。達(dá)到另一個(gè)閾值(800nmol/L),就會(huì)發(fā)生不可逆性聚集。因此,研究血小板胞漿游離鈣濃度的變化,對(duì)闡明血小板參與和調(diào)節(jié)的許多生理生化以及病理過(guò)程有重要意義。人們常用鈣熒光指示劑(水母素、Quin2、fura2、Fluro2AM、Fluo3Am)和雙波長(zhǎng)熒光光度術(shù)測(cè)定細(xì)胞胞漿游離鈣濃度\[2-4\]。本文在建立流式細(xì)胞術(shù)法測(cè)定血小板胞漿游離鈣濃度的基礎(chǔ)上,研究了凝血酶誘導(dǎo)的人血小板胞漿游離鈣濃度的變化。
1材料與方法
1.1實(shí)驗(yàn)材料
1.1.1血液樣本
成人血樣,男女兼有,1個(gè)月內(nèi)沒(méi)有服用阿司匹林及其他影響血小板功能的藥物??崭怪忪o脈采血,用ACD(ACD∶血=1∶6)抗凝。
1.1.2藥品與試劑
Fluo3AM(溶于DMSO中)、EGTA(溶于超純度去離子水中)、TritonX100、ADP、凝血酶、小牛血清白蛋白(BSA),均為Sigma(USA)公司產(chǎn)品。ACD(mmol/L:枸櫞酸7,枸櫞酸三鈉85,葡萄糖100)。Hepes緩沖液(mmol/L:NaCl145,KCl5,MgSO41.0,Hepes10,Na2HPO40.5,葡萄糖10,pH7.4)。CaASAHepes緩沖液(在Hepes緩沖液中加入120mmol/LCaCl2和0.94mmol/LASA,pH7.4)。CaHepes緩沖液(在Hepes緩沖液中加入120mmol/LCaCl2,pH7.4)。其他試劑均為市售產(chǎn)品。
1.1.3主要儀器
FACSCalibur型流式細(xì)胞儀,美國(guó)BectonDickinson公司產(chǎn)品。
1.2實(shí)驗(yàn)方法
1.2.1富血小板血漿(PRP)制備
抗凝血200×g離心10min,取上清即得富血小板血漿(PRP)。
1.2.2負(fù)載Fluo3AM血小板懸液制備
取PRP,加入乙酰水楊酸(ASA),使終濃度為0.94mmol/L。輕輕搖勻后800×g離心10min,棄上清。取沉淀的血小板,加入CaASAHepes緩沖液1mL,800×g離心10min,棄上清。取沉淀的血小板,加入CaASAHepes緩沖液重懸血小板,調(diào)節(jié)血小板濃度為2×109/mL。在血小板懸液中加入BSA(終濃度為1.5g/L)和Fluo3AM(4.0μmol/L),輕搖混勻后,在37℃水浴孵育30min后,800×g離心10min,棄上清,用1mLCaHepes緩沖液重復(fù)2次,洗去溶液中多余的Fluo3AM。用Hepes緩沖液重懸血小板,調(diào)節(jié)其濃度為2×106/mL。
1.2.3流式細(xì)胞儀測(cè)定血小板胞漿\[Ca2+\]i
取負(fù)載Fluo3AM的血小板懸液0.5mL,加入3mL聚乙烯試管中,用CellQuest軟件獲取和分析數(shù)據(jù),激發(fā)波長(zhǎng)為488nm,測(cè)定時(shí),用側(cè)向角(SSC)F1(Fluo3AM)散點(diǎn)圖識(shí)別血小板,用F1直方圖測(cè)定平均熒光強(qiáng)度。每個(gè)樣本獲取10000個(gè)血小板。用CrykiewiczG\[5\]的等比值法公式計(jì)算出血小板胞漿\[Ca2+\]i:\[Ca2+\]i=Kd×(F-Fmin)/(Fmax-F)式中Kd是Ca2+結(jié)合Fluo3AM的解離常數(shù),為204nmol/L(37℃)。F為各樣本熒光強(qiáng)度的測(cè)定值。Fmax和Fmin分別是zui大熒光強(qiáng)度和zui小熒光強(qiáng)度的測(cè)定值。
zui大熒光強(qiáng)度和zui小熒光強(qiáng)度的測(cè)定:在各試管中加入60g/LTritonX100、5mmol/LCaCl2,搖勻,靜置10min,用流式細(xì)胞儀測(cè)定平均熒光強(qiáng)度,此乃zui大熒光強(qiáng)度。用無(wú)鈣的Hepes緩沖液重懸血小板,調(diào)其濃度為2×106/mL,加入25mmol/LEGTA(鈣特異性絡(luò)合劑),搖勻,靜置10min,用流式細(xì)胞儀測(cè)定平均熒光強(qiáng)度,此乃zui小熒光強(qiáng)度。
1.2.4凝血酶對(duì)血小板胞漿\[Ca2+\]i的影響
分別研究緩沖液中有鈣和無(wú)鈣存在時(shí),凝血酶對(duì)血小板胞漿游離鈣濃度的影響。在CaASAHepes緩沖液和無(wú)鈣的Hepes緩沖液中加入凝血酶10、100、1000U/L,用此緩沖液制備負(fù)載Fluo3AM的血小板懸液,用流式細(xì)胞儀測(cè)定10000個(gè)血小板的平均熒光強(qiáng)度。為了觀察血小板\[Ca2+\]i隨時(shí)間的變化,分別在加入凝血酶后5、10、15min時(shí)各測(cè)定一次。
〖2〗西安交通大學(xué)學(xué)報(bào)(醫(yī)學(xué)版)〖3〗第26卷5期〖2〗莊明明,溫奕欣,劉少列,等.流式細(xì)胞儀測(cè)定血小板胞漿游離鈣濃度1.3 統(tǒng)計(jì)學(xué)方法 所用數(shù)據(jù)用±s表示,用SPSS10.0version軟件和tstudenttest法統(tǒng)計(jì)分析實(shí)驗(yàn)結(jié)果。
2結(jié)果
2.1人血小板胞漿\[Ca2+\]i
將樣本放置在樣本架上,按下"run"按鈕,開(kāi)始獲取數(shù)據(jù),以未標(biāo)記熒光素的樣本為空白對(duì)照,并用它調(diào)整陰性區(qū)域的位置,然后依次測(cè)定各個(gè)樣本。結(jié)果見(jiàn)圖1。
2.2在外鈣\[Ca2+\]o存在時(shí)凝血酶刺激對(duì)人血小板\[Ca2+\]i的影響
在1mmol/L\[Ca2+\]o存在時(shí),血小板靜息\[Ca2+\]i為(108.9±10.5)nmol/L(n=8),在加入10、100、1000U/L凝血酶后,血小板\[Ca2+\]i明顯上升,而且有明顯的劑量依賴(lài)關(guān)系(表1)。100U/L凝血酶可以使\[Ca2+\]i增加6.4倍。5min時(shí),血小板\[Ca2+\]i水平較開(kāi)始加入凝血酶時(shí)降低,10min時(shí)接近于靜息水平。
2.3無(wú)外鈣\[Ca2+\]o存在時(shí)人血小板\[Ca2+\]i對(duì)凝血酶刺激的反應(yīng)
在緩沖液中沒(méi)有鈣存在的情況下,血小板的\[Ca2+\]i為(29.5±5.6)nmol/L(n=8),緩沖液中凝血酶的水平為10、100、1000U/L時(shí),血小板\[Ca2+\]i的水平有所上升,但上升的程度明顯小于有外鈣時(shí)。100U/L凝血酶使血小板\[Ca2+\]i增加1.3~1.5倍,并在5min時(shí)恢復(fù)到靜息水平(表1)。表1有或無(wú)\[Ca2+\]o時(shí)凝血酶對(duì)血小板\[Ca2+\]i的影響(略)
3討論
本實(shí)驗(yàn)使用的Fluo3AM為細(xì)胞可通透的細(xì)胞內(nèi)鈣熒光指示劑,在沒(méi)有水解前和(或)無(wú)Ca2+存在時(shí),不顯示熒光,低親和性結(jié)合測(cè)量到的瞬間Ca2+峰值比Fura2的高\(yùn)[6\]。TritonX100能增加細(xì)胞膜通透性,提高胞漿內(nèi)Ca2+的濃度,因此,用它測(cè)定胞漿內(nèi)Ca2+飽和濃度。EGTA\[Ethylenelycolbis(2aminoethylether)-N,N,N′,N′tetraaceticacid\]是鎂存在時(shí)測(cè)定鈣濃度的鰲合劑\[7\],也是有效的金屬蛋白酶的抑制劑\[8\],在測(cè)定zui小熒光強(qiáng)度時(shí),用EGTA絡(luò)合胞漿內(nèi)的Ca2+,使胞外的Ca2+濃度zui低。ASA(乙酰水楊酸)是血小板穩(wěn)定劑,可以防止血小板聚集,并保證血小板的功能完善。
血小板靜息\[Ca2+\]i是指沒(méi)有任何刺激存在時(shí),血小板胞漿的游離鈣濃度。實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示,\[Ca2+\]o為1mmol/L時(shí),人血小板的靜息\[Ca2+\]i為(108.9±10.5)nmol/L;\[Ca2+\]o為0mmol/L時(shí),其靜息\[Ca2+\]i為(29.5±2.6)nmol/L。在血小板緩沖液中加入凝血酶后,血小板\[Ca2+\]i迅速上升,而且有明顯的劑量依賴(lài)關(guān)系。\[Ca2+\]o為1mmol/L時(shí),0.01、0.1、1.0U/mL的凝血酶使血小板內(nèi)游離鈣濃度分別上升1.58、6.42和10.05倍。另外,\[Ca2+\]o為0mmol/L時(shí),凝血酶也使\[Ca2+\]i有所提高,但提高的幅度明顯減少,如0.01、0.1、1.0U/mL的凝血酶使血小板內(nèi)游離鈣濃度分別上升0.13、1.3和2.5倍。結(jié)果說(shuō)明,血小板\[Ca2+\]i的高低與\[Ca2+\]o存在與否有密切關(guān)系。而且在凝血酶的刺激存在時(shí),\[Ca2+\]i提高的程度也與\[Ca2+\]o有密切關(guān)系。提示血小板內(nèi)鈣的升高主要依賴(lài)于\[Ca2+\]o的存在,但不排除內(nèi)鈣釋放的參與\[9,10\]。
流式細(xì)胞術(shù)在生物醫(yī)學(xué)和分子生物學(xué)研究領(lǐng)域的廣泛應(yīng)用,大大推進(jìn)了相關(guān)學(xué)科的發(fā)展。結(jié)合熒光探針技術(shù),對(duì)細(xì)胞表面抗原、熒光蛋白表達(dá)、DNA含量及其細(xì)胞周期、細(xì)胞凋亡等進(jìn)行大量、多參數(shù)檢測(cè)與分析,是流式細(xì)胞術(shù)的特點(diǎn)。我們應(yīng)用Fluo3AM和流式細(xì)胞術(shù)測(cè)定血小板\[Ca2+\]i,因?yàn)镕luo3AM很容易進(jìn)入細(xì)胞,熒光強(qiáng)度高,操作方法簡(jiǎn)單易行,測(cè)量靈敏度高,重復(fù)性好,是研究細(xì)胞內(nèi)\[Ca2+\]i的有效方法。
參考文獻(xiàn):
[1\]RinkTJ,SmithSW,TsienRY.CytoplasmicfreeCa2+inhumanplaets:Ca2+thresholdandCa2+independentactionforshapechangeandsecretion\[J\].FEBSLett,1982,148(1):21-26.
[2\]汪鐘,王健美,翁進(jìn).血小板胞漿游離\[Ca2+\]i濃度測(cè)定\[A\].張均田主編.現(xiàn)代藥理學(xué)方法\[M\](下冊(cè)).北京:北京醫(yī)科大學(xué)、中國(guó)協(xié)和醫(yī)科大學(xué)聯(lián)合出版社,1998.1164-1166.
[3\]俞晶,胡文淑.甲基蓮心堿對(duì)血小板聚集和胞漿游離鈣離子濃度的影響\[J\].中國(guó)毒理學(xué)與藥理學(xué)雜志,1996,10(2):120-122.
[4\]李建華,孫繼領(lǐng),高小環(huán).應(yīng)用Fura2AM檢測(cè)血小板胞漿游離鈣濃度\[J\].上海醫(yī)學(xué)檢驗(yàn)雜志,1996,11(2):82-83.
[5\]GrynkiewiczG,PoenieM,TsienRY.AnewgenerationofCa2+indicatorswithgreatlyimprovedfluorescenceproperties\[J\].JBiolChem,1985,260(6):3440-3450.
[6\]KaoJP,HarootunianAT,TsienRY.Photochemicallygeneratedcytosoliccalciumpulsesandtheirdetectionbyfluo3\[J\].JBiolChem,1989,264(12):8179-8184.
[7\]BirchMachinMA,DawsonAP.EffectsofchelatingagentsontheCa2+stimulatedATPaseofratliverplasmamembranes\[J\].BiochimBiophysActa,1986,855(2):277-285.
[8\]VidalH,StDenisJF,PainchaudE,etal.Atesttoevaluatetheeffectofindividualcomponentsofethyleneglycolbis(betaaminoethylether)N,N,N',N'tetraaceticacidbuffersonenzymaticactivity\[J\].AnalBiochem,1991,193(1):135-141.
[9\]HemstapatK,SmithMT,MonteithGR.MeasurementofintracellularCa2+inculturedratembryonichippocampalneuronsusing
afluorescencemicroplatereader:potentialapplicationtobiomolecularscreening\[J\].JPharmacolToxicolMethods,2004,49(2):
81-87.
[10\]叢玉隆,李綿洋,鄧新立,等.高剪切力活化血小板鈣離子反應(yīng)的研究\[J\].中華檢驗(yàn)醫(yī)學(xué)雜志,2004,27(1):13-16.